La plateforme AnimEx est située sur le site de la Faculté de Pharmacie de l’Université Paris-Saclay. Sa mission principale est d’offrir à la communauté scientifique du secteur public ou privé, des structures d’hébergement et d’élevage d’animaux et des équipements pour l’exploration fonctionnelle du petit animal.

AnimEx est membre de CAPSud (Consortium des Animalerie Paris Sud) et est rattaché au comité d’éthique CEEA n°26.

AnimEx est référencée dans Pluginlabs

Plaquette de présentation à télécharger :

PRESTATIONS _______________________

Modèles pré-cliniques

• Insuffisance cardiaque chez le rat par pose d’un clip aortique ;
• Infarctus du myocarde chez le rat par ligature de la coronaire gauche ;
• Ischémie/reperfusion du ventricule gauche chez le rat ;
• Hypertension artérielle pulmonaire (Chambre d’hypoxie) ;
• Dysfonctionnements immunitaires ;
• Obésité ;
• Alcoolisation ;
• Décontamination de lignées par hystérectomie aseptique.

Prestations de service
Les animaux garantis EOPS, achetés chez des éleveurs agréés sont directement hébergés dans l’animalerie. Avant toute commande le directeur de la plateforme doit donner son accord. Pour tous les autres animaux, une demande doit être faite, accompagnée des 3 derniers bilans sanitaires. Si le bilan sanitaire est satisfaisant, les animaux seront hébergés en quarantaine. Un bilan sanitaire sera effectué en quarantaine. Selon les résultats de ce bilan, les animaux seront intégrés à l’animalerie ou bien devront être décontaminés, euthanasiés ou redirigés vers une animalerie susceptible de les accepter malgré leur état sanitaire.

Le personnel de l’animalerie gère les élevages de souris, de rats et de lapins. A la demande il peut se charger du marquage et des biopsies en vue du génotypage. Il réalise, pour certaines lignées, le génotypage des souris en collaboration avec la plateforme ACTAGen.

Conditions d’accès
Après avoir suivi une formation interne, les utilisateurs de la plateforme s’engagent par écrit à respecter le règlement intérieur de la plateforme.
Seules les personnes ayant suivi cette formation peuvent accéder à l’animalerie grâce à leur badge.
Toute personne qui souhaite réaliser des expérimentations sur les animaux vivants doit fournir au préalable au directeur technique de la plateforme :

• une copie de l’habilitation à expérimenter sur les animaux du responsable de l’expérimentation,
• une copie de l’attestation de formation des expérimentateurs,
• une copie de l’autorisation du projet émanant du Ministère de l’Enseignement Supérieur de la Recherche,
• une copie de la classification des OGM le cas échéant.

Horaires
Le personnel de la plateforme est présent du lundi au vendredi de 9h00 à 17h00.
Le personnel de l’animalerie assure une permanence les week-ends et jours fériés
L’accès aux locaux se fait grâce aux badges de 7h00 à 20h00 du lundi au vendredi.
En dehors de ces horaires une demande spéciale doit être faite au moins 72h avant, auprès du responsable technique (valerie.domergue@universite-paris-saclay ou 01.80.00.61.69).
En cas de travail isolé dans les locaux de l’animalerie, l’expérimentateur doit se signaler auprès du PCI et se munir d’un PTI.

EQUIPEMENTS ______________________

Capacité d’hébergement de 7 800 cages (souris, rats, lapins, hamsters, cobayes).
Les souris, les rats et les hamsters sont hébergés en portoirs ventilés et le change est réalisé sous hotte.
Gestion d’environ 100 lignées de souris transgéniques, de 3 lignées de rats transgéniques et d’une lignée de lapins transgéniques.
Des locaux de 2 00m² répartis en 4 secteurs et une laverie automatisée et robotisée.

• Secteur A1 expérimental
  • 7 salles d’hébergement dont 1 pour les animaux immuno-déficients
  • 8 salles d’expérimentation dont une pour la manipulation de radio-éléments
  • 11 salles d’exploration fonctionnelle du petit animal dont 1 pour les animaux immunodéficients
  • 2 salles de chirurgie

• Secteur A1 EOPS dédié à l’élevage de souris et rats
  • 5 salles d’hébergement

• Secteur Quarantaine/Mise en cage
  • 1 salle de mise en cage équipée d’une hotte et d’un passe-plat vers le secteur A1 EOPS
  • 1 quarantaine équipée d’une hotte, de portoirs ventilés, d’un sas chimique.

• Secteur A2
  • 1 salle d’hébergement en isolateurs couplée à 2 laboratoires avec PSM II.
  • 8 blocs constitués d’un sas <-> salle d’expérimentation avec PSM II <-> salle d’hébergement en portoir ventilé
  • Sas chimique et autoclave en sortie de secteur.

• Une laverie (Robot de vidage, aspiration centralisée des litières sales, cabine de lavage, robot de remplissage, hotte de distribution de litières propres, station automatisée de traitement de biberons, autoclave et sas chimique en barrière de zone)
   
• Des équipements pour l’exploration fonctionnelle :
  • Tests Comportementaux :
    

    Descriptif Tests comportementaux
    • Open field
    • Mesure de l’activité du rongeur dans son environnement familier
    • Le test d’alimentation supprimée par la nouveauté ou Novelty Suppressed Feeding (NSF)
    • Le test de la nage forcée
    • Le labyrinthe en croix surélevée
    • Le test de suspension caudale (TST)
    • Le test du rotarod
    • Le test de reconnaissance d’objet
    • Le test de Porsolt ou test de la nage forcée (FST)
    • Piscine de Morris
    • Contextual fear conditioning
      
      
  • Exploration cardiovasculaire :
    • Echocardiographe vivid 9 (rats et souris) CordDim

      

      

    • Vevo LAZR-X Visual Sonics - Fujifilm Equipement en imagerie à haute résolution du petit animal consistant en un échographe de dernière génération à haute fréquence d’ultrasons (>20 MegaHertz) permettant d’obtenir des images de haute résolution en 3D, couplé à un système laser d’imagerie photoacoustique permettant de localiser des traceurs nano particulaires ou des chromophores endogènes dans les tissus.

      

      
      
      

    • Plétysmographe pour la mesure de la pression artérielle et la fréquence cardiaque à la queue (rats et souris)
      
      
    • Télémètrie (Pression artérielle et ECG) rats et souris

      

      
      
      

    • Tapis roulants pour les souris (8 canaux) et les rats (6 canaux) vitesse et pente modulables

• • Imagerie in vivo :
    • 2 Imageurs IVIS Lumina série III

PUBLICATIONS ______________________

Characterization of Kcnk3-Mutated Rat, a Novel Model of Pulmonary Hypertension.
Lambert M, Capuano V, Boet A, Tesson L, Bertero T, Nakhleh MK, Remy S, Anegon I, Pechoux C, Hautefort A, Rucker-Martin C, Manoury B, Domergue V, Mercier O, Girerd B, Montani D, Perros F, Humbert M, Antigny F.
Circ Res. (2019) Sep 13 ;125(7):678-695.

The BET Bromodomain Inhibitor I-BET-151 Induces Structural and Functional Alterations of the Heart Mitochondria in Healthy Male Mice and Rats.
Piquereau J, Boet A, Péchoux C, Antigny F, Lambert M, Gressette M, Ranchoux B, Gambaryan N, Domergue V, Mumby S, Montani D, Adcock IM, Humbert M, Garnier A, Rucker-Martin C, Perros F.
Int J Mol Sci. (2019) Mar 27 ;20(7).

Detection of Hypoxia-Regulated MicroRNAs in blood as Potential Biomarkers of HIF Stabilizer Molidustat.
Marchand A, Roulland I, Semence F, Schröder K, Domergue V, Audran M.
Microrna. (2019) Jan 17. doi : 10.2174.

Contribution of BKCa channels to vascular tone regulation by PDE3 and PDE4 is lost in
heart failure.
Sarah Idres, Germain Perrin, Valérie Domergue, Florence Lefebvre, Susana Gomez, Audrey Varin, Rodolphe Fischmeister, Véronique Leblais and Boris Manoury.
Cardiovasc Res. (2019) 115(1):130-144.

Bmpr2 mutant rats develop pulmonary and cardiac characteristics of pulmonary arterial hypertension. Aurélie Hautefort, Pedro Mendes-Ferreira, Jessica Sabourin, Grégoire Manaud, Thomas Bertero, Catherine Rucker-Martin, Marianne Riou, Rui Adão, Boris Manoury, Mélanie Lambert, Angèle Boet, Florence Lecerf, Valérie Domergue, Carmen Brás-Silva, Ana Maria Gomez, David Montani, Barbara Girerd, Marc Humbert, Fabrice Antigny* and Frédéric Perros*.
Circulation (2018) 139:932-948.

PDE4 and mAKAPβ are nodal organizers of β2-AR nuclear PKA signaling in cardiac myocytes.
Bedioune I, Lefebvre F, Lechêne P, Varin A, Domergue V, Kapiloff MS, Fischmeister R, Vandecasteele G.
Cardiovasc Res. (2018) 114:1499-1511.

PERSONNELS ________________________

• D^r Denis DAVID, PU–UMR-S 1178, Référent scientifique
• D^r Anne-Marie CASSARD-DOULCIER , DR–UMR-S 996, Référent scientifique
• D^r Thierry TORDJMANN, DR–UMR-S 1193, Référent scientifique
• Valérie DOMERGUE, Ingénieur de Recherche IPSIT, Responsable technique
• Pauline, Technicienne IPSIT, Adjointe
• Ayma, Technicienne IPSIT
• Julie, Technicienne IPSIT
• Manon, Technicienne IPSIT
• Cristian, Technicien IPSIT
• Olivier, Adjoint technique IPSIT
• Loïc, Adjoint technique IPSIT
• Estelle, Adjoint technique IPSIT
• Sidy, Adjoint technique IPSIT

LOCALISATION ET CONTACTS __________

Plateforme AnimEx IPSIT
Faculté de Pharmacie
Bâtiment Henri MOISSAN
17, Avenue des Sciences
91400 ORSAY

Directeur technique : Valérie DOMERGUE : e-mail
Responsables scientifiques :
Denis DAVID : e-mail
Anne-Marie CASSARD-DOULCIER : e-mail
Thierry TORDJMANN : e-mail
tel : 01 8000 6169